Características generales de la intoxicación y mecanismo de acción.
El monóxido de carbono es un gas incoloro, inodoro, insípido y no irritante que se origina durante la combustión incompleta del carbón. Las fuentes productoras más frecuentes son estufas, calefones, hornos, incineradores, automóviles etc en mal funcionamiento. La toxicidad del monóxido de carbono (CO) se debe a su combinación con la hemoglobina para formar carboxihemoglobina (COHb). En dicha forma la hemoglobina no transporta oxígeno, dado que ambos gases (O2 y CO) reaccionan con el grupo hemo en la molécula tetramérica de la hemoglobina. Sin embargo, la afinidad del monóxido de carbono por la hemoglobina es cerca de 240 veces mayor que por el oxígeno, de esta manera, la intoxicación puede ocurrir aún cuando pequeñas cantidades de CO se encuentren presentes en la atmósfera. Cuando el paciente es removido del ambiente contaminado, la carboxihemoglobina desaparece rápidamente, particularmente cuando el oxígeno es administrado. Solo trazas pueden ser detectadas cuando el paciente alcanza el hospital y de esta manera la medida de carboxihemoglobina es raramente justificada en la clínica toxicológica.
CO +Hb.Fe.O2 <=======> Hb.Fe.CO + O2
La formación de oxihemoglobina (Hb.Fe.O2) como de carboxihemoglobina
(Hb.Fe.CO) son reacciones reversibles y dependen principalmente de la presión
parcial de los gases y del pH sanguíneo aunque otros factores como la
temperatura y la concentración iónica tienen también incidencia.
La toxicidad del monóxido de carbono se manifiesta no sólo de
la interferencia en el aporte de oxígeno por la sangre sino también
ejerce efecto directo al unirse a los citocromos celulares como los presentes
en las enzinas respiratorias y la mioglobina.
Consideraciones generales en la analítica toxicológica
El aspecto del cadáver y el color carminado de las vísceras constituyen manifestaciones propias de la intoxicación oxicarbonada aguda. Dicho color resulta visible en los órganos como cerebro, corazón, pulmones y musculatura voluntaria. En los casos en que el sujeto está vivo, la sangre deberá extraerse, a lo sumo hasta dos horas después de la exposición, puesto que gran parte del monóxido resulta eliminado por vía pulmonar. Para casos mortales, la muestra de sangre deberá extraerse lo más rápido posible antes que se inicien los procesos putrefactivos. Se ha demostrado que el monóxido de carbono no se absorbe post-mortem constituyendo su determinación un índice del contenido en el momento de la muerte. La carboxihemoglobina es un derivado muy estable y su presencia en sangre puede demostrarse después de la descomposición cadavérica así como en cadáveres sometidos a altas temperaturas. El color carminado típico de la carboxihemoglobina se observa en muestras de sangre cuando el porcentaje de saturación es del 30% o superior, distinguiéndose fácilmente de la oxihemoglobina o de la hemoglobina misma.
Toma de muestra
La recolección de la muestra de sangre debe ser obtenida por punción venosa con anticoagulante (heparina) evitando la formación de burbujas o la entrada de aire a la jeringa. Se recomienda obtener sangre del corazón o de las venas gruesas como la femoral. El recipiente a utilizar para la conservación de la muestra debe estar escrupulosamente limpio, seco y cerrado en forma hermética.
Determinación analítica de carboxihemoglobina.
La determinación cuantitativa de la carboxihemoglogina en sangre puede
realizarse por métodos espectroscópicos que se basan en los diferentes
espectros de absorción que presentan la carboxihemoglobina respecto de
la hemoglobina. En todos ellos se realizan medidas de absorción a distintas
longitudes de onda de diluciones adecuadas de la sangre en estudio. Estas longitudes
de onda corresponden a los máximos, mínimos o puntos isosbésticos
de absorción de cada una de las especies de hemoglobinaque coexisten
en la muestra.
Otra propiedad que es aprovechada por estos métodos es la gran estabilidad
que presenta la carboxihemoglobina respecto de la oxihemoglobina frente a reactivos
reductores o metahemoglobinizantes. A ojo desnudo, la sangre con alto contenido
de carboxihemoglobina presenta un marcado tono carmín, mientras que la
sangre con alto contenido de metahemoglobina es chocolate.
Algunos métodos además implican la medida de la absorción
de la muestra a longitudes de onda que corresponden a puntos isosbésticos
de los espectros correspondientes a los efectos de realizar correcciones a las
relaciones encontradas para los máximos de absorción.
Se describen a continuación ensayos de tipo cualitativos que presentan
carácter práctico para su identificación.
a)Ensayo de dilución
El ensayo de dilución consiste en preparar soluciones sanguíneas
al 1% de muestra a analizar y de sangre normal. Se observa simultáneamente
ambos tubos de ensayo con luz natural difusa. La sangre normal presenta color
rojo amarillento, mientras la muestra, si contiene carboxihemoglobina, presenta
color carminado neto. Este ensayo es seguro y práctico. Este ensayo es
estable con concentraciones de hemoglobina superiores al 20%
b) Ensayo alcalino
Se basa en la mayor estabilidad de la carboxihemoglobina con respecto a la hemoglobina
en similares condiciones alcalinas.
En un tubo de ensayo colocar 3 a 4 gotas de la sangre a analizar y en otro tubo
similar colocar igual número de gotas de sangre normal, agregar 15 ml
de agua destilada y mezclar bien. Agregar a cada tubo 5 gotas de solución
de hidróxido de sodio al 10% y mezclar bien. La sangre normal adquiere
color castaño a castaño verdoso (hematina alcalina), mientras
que la sangre oxicarbonada permanece inalterada (color carminado durante cierto
tiempo). El ensayo ofrece un neto contraste y resulta positivo cuando la concentración
de carboxihemoglobina es superior al 10%. La sangre fetal interfiere en este
ensayo dado que última produce una transformación retardada frente
al hidróxido de sodio.
A continuación se describen diferentes métodos para la identificación
y cuantificación de carboxihemoglobina en sangre: examen espectroscópico,
espectrofotométrico, cromatografía gaseosa e infra rojo.
Identificación de carboxihemoglobina por el método espectroscópico
El examen espectroscópico se basa en la absorción selectiva que,
a determinadas longitudes de onda del espectro visible, presentan la hemoglobina
y sus derivados en diluciones convenientes.
Las soluciones de oxihemoglobina al 1-2% observadas al espectroscopio presentan
características identificativas de aplicación práctica
que, en la zona visible se destacan entre las rayas D y E del espectro. La carboxihemoglobina,
en similar dilución presenta un espectro de absorción muy similar
aunque desplazado en su posición con respecto a la oxihemoglobina.
La dilución de oxihemoglobina presenta dos bandas de absorción,
cuyas posiciones son: banda
(izquierda):
586-566 nm, banda ß (derecha): 550-528 nm.
Las bandas de la carboxihemoglobina presentan los siguientes límites:
banda
: 580-560 nm, banda
ß: 546-526 nm.
En los espectroscopios de bajo poder resolutivo esa diferencia es poco neta
por lo que es necesario fijar la diferencia. Ello se hace volatilizando NaCl
utilizando un mechero colocado frente a la abertura del colimador entre ésta
y la solución sanguínea testigo. Al agregar ditionito de sodio
(S2O4=) la HbO2 es reducida, desapareciendo las bandas
y ß y se forma una
banda ancha (Banda de Stokes) entre los 590 nm 540 nm más débil,
mientras que la carboxihemoglobina no se modifica frente al tratamiento con
el reductor.
FeHbO2 + S2O4=
HbFe + 2 SO3=
Para la identificación de HBCO se fija la raya D del espectro de emisión
de Na con un punto arbitrario de la escala. Luego, se prepara una solución
al 1% de sangre oxigenada y se observa el espectro. Luego, se prepara una solución
al 1% de sangre con HbCO y se observa el espectro. Se realizan mezclas de HbO2
y HbCO y se determina la mínima [COHb]. Se reduce la HbO2
con S2O4= y se observa el espectro. A continuación
se coloca igual dilución de la sangre en estudio. Si se observan las
mismas posiciones relativas de las bandas en los espectros, la sangre en examen
no contiene carboxihemoglobina o su presencia está por debajo del índice
de detección. En cambio, de contener carboxihemoglobina se observará
un desplazamiento de ambas bandas hacia la región violeta del espectro.
Al agregar el ditionito de sodio, la sangre normal presenta la banda de Stockes
que cubre el espectro. La sangre carboxigenada no modifica las bandas originales.
En los casos de elevado contenido de carboxihemoglobina como ocurre en los casos
mortales, la diferenciación con el pigmento normal mediante el tratamiento
reductor no ofrece inconveniente alguno, pero en los casos en que el sujeto
intoxicado ha sido retirado del ambiente contaminado y sometido a tratamiento
con oxígeno, la sangre puede acusar un menor tenor en carboxihemoglobina.
Al tratar la dilución sanguínea con el ditionito, la oxihemoglobina
prevalece, se reduce y la banda de Stokes cubre el espacio libre existente entre
las dos bandas de la carboxihemoglobina que no resulta alterada por adición
del reductor. La Fig. 1 presenta los espectros de absorción oxihemoglobina,
hemoglobina reducida y carboxihemoglobina. La carboxihemoglobina deberá
identificarse por otros procedimientos (microdifusión, extracción
etc.).
En general se considera la sensibilidad de este método equivale a 3.2
ml de monóxido de carbono por 100 ml de sangre total. Entre las causas
de error se encuentra la sangre alterada que pueda contener hematina alcalina
la que al reducirse se transforma en hemocromógeno y su espectro puede
confundirse con el de la carboxihemoglobina.
Fig. 1: Espectros de absorción de a) oxihemoglobina, b) hemoglobina reducida y c) carboxihemoglobina
Determinación cuantitativa de carboxihemoglobina
Método espectrofotométrico
Algunos métodos espectrofotométricos emplean el sistema oxihemoglobina-
carboxihemoglobina. El siguiente método se basa en el hecho que la sangre
normal contiene varias formas de hemoglobina (la forma reducida, la forma oxidada,
y pequeña cantidades de metahemoglobina), y si un agente reductor como
el ditionito de sodio es agregado a la sangre, la forma oxigenada y la metahemoglobina
son cuantitativamente convertidas a la forma reducida la cual presenta un espectro
como se presenta en la Fig. 2.
El monóxido de carbono presenta mayor afinidad por la hemoglobina que
el oxígeno mientras que la carboxihemoglobina no es reducida por el ditionito
de sodio. Así, la carboxihemoglobina permanece sin modificarse como se
muestra en la curva A del espectro en la Fig. aún cuando se ha realizado
un tratamiento con ditionito de sodio.
En la Fig. 2 se observa que la máxima diferencia de absorbancia para
los espectros de carboxihemoglobina (A) y hemoglobina reducida (B) se presenta
a 540 nm, mientras que 579 nm presenta la misma absorbancia (punto isosbéstico).
El porcentaje de saturación de monóxido de carbono en una muestra
de sangre puede calcularse de la medida de la absorbancia a esa longitud de
onda de la muestra saturada con monóxido de carbono (A), la muestra libre
de monóxido de carbono (B) y la muestra sin tratar (C) luego de la reducción
con ditionito de sodio.
Fig. 2: Espectros de absorción de (A) carboxihemoglobina, (B) hemoglobina reducida y (C) y muestra de sangre de paciente intoxicado con monóxido de carbono.
El método de Amenta (1963) y luego modificado por Heilmeyer trata la sangre con amoníaco diluido y determina la absorbancia a 575 nm, 560 nm y 498 nm. La relación obtenida es comparada con las soluciones patrones de oxihemoglobina y de carboxihemoglobina calculándose así el porcentaje de carboxihemoglobina
R= (A 575 - A 560) A 496
A 498 nm es el punto isosbéstico, los pequeños errores en el ajuste de la longitud de onda no afecta mayoritariamente las lecturas de absorbancia. Las longitudes de onda de 560 y 575 representan aproximadamente los puntos mínimos y máximos de la gráfica del espectro de absorción de la oxihemoglobina los que pueden ajustarse en las escalas de la mayoría de los espectrofotómetros.
El método propuesto por Curry, mide la absorción de diluciones similares de muestra a 514 nm (máximo para HbO2)), 560 nm (mínimo para HbO2) y 576 nm (máximo para HbO2). El porcentaje de saturación de la muestra se obtiene a partir de los coeficientes A 576/A 560 y A 541/A 580 .
El método de Commins se separa la muestra en dos alícuotas, un de las cuales es tratada con un exceso de oxígeno para obtener un 100% de HbO2. Luego se mide la absorbancia a 420 nm para ambas muestras que corresponde a un punto de máxima diferencia entre los espectros de HbO2 y HbCO y se compara luego con una curva patrón preparada con concentraciones conocidas de HbCO.
El método de Sanderson se basa en la existencia de un punto isosbéstico para los espectros de la mHb y la HbCO en los 579nm. De esta manera, luego de diluir la sangre y tratarla con un adecuado reductor, se calcula la pendiente del espectro de la muestra problema alrededor de este punto por medidas a 575nm y 585nm.
El método propuesto por Panell (1981) corresponde a una modificación de Commins y no presenta el inconveniente de tener que trabajar con sangre fresca, pudiendo utilizarse entonces para muestras forenses existe un alto nivel de mHb y otros derivados modificados de la Hb que interfieren en los métodos anteriores. Utiliza como agente reductor el ditionito de sodio. En este método se realizan medidas respecto a la sangre oxigenada a 435nm, 421nm, 570nm y 620nm aplicándose la siguiente relación para la obtención del porcentaje de saturación de HbCO:
| (A 435 + A 421) | |
| %HbCO=100-F |
|
| (A 570 - A 620) |
El valor de F se determina experimentalmente por mediciones realizadas sobre sangre saturada con oxígeno, es decir, con 0% de HbCO.
Determinación cuantitativa de carboxihemoglobina
mediante separación física de la carboxihemoglobina de otras hemoglobinas
El método se basa en la alta resistencia relativa de HbCO al calor mientras que las otras formas de hemoglobina sufren coagulación. Esta técnica es simple de realizar y permite ser aplicada con resultados reproducibles si se mantienen estrictamente las condiciones indicadas: calentamiento a 55 ± 0.5ºC durante 5 minutos y pH 5.05 ± 0.05.
Reactivos
1. Buffer acetato. Mezclar 1 volumen de solución 1 (300 g de ácido
acético glacial en 1 litro de agua destilada) mas 3 volúmenes
de solución 2 (408 g de acetato de sodio CH3COONa.3H2O
disuelto en 1 litro de agua). El pH no debe variar de 5.05 ± 0.05.
2. Antiespumante. Mezclar el antiespumante con agua al 1% y se agita vigorosamente
con algunas perlas de vidrio.
Equipos
Baño termostático de agua a 55 ± 0.05ºC
Centrífuga a 5000 rpm. Capacidad 4 o más tubos de 10-15 ml.
Especrofotómetro UV visible
Procedimiento
5 ml de sangre a analizar previamente homogenizada cuidadosamente se mezclan con 15 de agua destilada y 1 ml de antiespumante por inversión. La mitad de esta solución es separada en un tubo, rotulada y guardada en oscuridad. La otra mitad es saturada con CO durante 30 minutos asegurándose que el volumen de la solución sanguínea no cambie. Para cada una de las soluciones (la sin tratar y la tratada con CO) dos alícuotas de 1.0 ml son ubicadas en 4 tubos de centrífuga conteniendo 4.0 ml de buffer acetato. Después de mezclar por inmersión dos veces cada tubo, los tubos se ubican en un baño termostático de agua a 55.0 ± 0.5ºC exactamente por 5 minutos. Luego los tubos se enfrían en agua fría durante otros 5 minutos y centrifugados a 5000 rpm durante 5 minutos. Dos ml de cada uno de los cuatro sobrenadantes se diluyen con 10.0 ml de agua destilada y se mezclan 2 o 3 veces por inmersión en el tubo.Para la lectura se requieren tres cubetas: cubeta 1 (blanco) es llenada con agua destilada, cubeta 2 es llenada con la solución de sangre sin tratar y cubeta 3 con solución de sangre saturada con CO. La absorbancia de las dos soluciones se leen contra agua a 570 mn y 630 nm. Luego de la lectura, la cubeta 2 es vaciada y llenada con el duplicado de la solución de sangre sin tratar. La cubeta 3 también luego de la lectura es vaciada y llenada con el duplicado de la solución de sangre saturada con CO. De esta manera no se requiere enjuague. Se repite la lectura a 570 y 630 nm.
Los cálculos se realizan mediante la siguiente relación
| (A 570 / A 630)A solucion sin tratar | ||
| %COHb= |
|
100 |
| (A 570 - A 630) solucion con CO |
Los valores duplicados no deben variar mas de 2 a 3 % de saturación de COHb. Con valores de saturación de COHb menores a 20% dos tipos de dificultades pueden presentarse: primero, la lectura en el espectrofotómetro de muestra sin tratar es baja e incierta. Segundo, la coprecipitación de COHb con el precipitado de los derivados de hemoglobina puede ser un factor importante que tiende a disminuir la cantidad residual de COHb en el sobrenadante. El método arroja resultados reproducibles cuando la saturación de COHb es superior al 20%. Asimismo, el método es moderadamente sensible a los cambios que ocurren en la sangre luego del proceso postmortem.
CROMATOGRAFÍA GASEOSA
La cromatografía gaseosa se considera una metodología universal
para la determinación de compuestos con una presión de vapor lo
suficientemente alta, por lo que en general se consideraría adecuada
para tóxicos volátiles y gaseosos. Aún esto, la determinación
de mon6xído de carbono por CG presenta diversos inconvenientes que es
necesario tomar en cuenta en el momento de optar o no por la utilización
de esta metodología.
Por un lado la elevada presión de vapor del monóxido de carbono
requiere de columnas y/o de programas que sean capaces de separar al analíto
de los gases utilizados como carrier, helio o nitrógeno generalmente
y de otros gases que pudiesen coexistir con el CO como el C02. Este
inconveniente se subsana utilizando columnas capilares y programas de corrida
cromatográfica que trabajan comenzando a temperaturas subambiente, típicamente
a -20"C. Los equipos requeridos para estas condiciones cromatográficas
son muy poco frecuentes en laboratorios de toxicología.
Por otro lado, la detección de la señal de monóxido de
carbono a la salida de la columna CG se realiza mediante dos metodologías
posibles. Una forma es la utilización de una post columna con un catalizador
y condiciones de hidrogenación adecuadas para transformar al monóxido
de carbono cuantitativamente en metano, luego de los cual este es medido por
un detector común iónico de llama (FID). La otra forma es la utilización
de un detector de conductividad térmica. Ni el detector de conductividad
térmica, ni el catalizador post columna son elementos comunes en un laboratorio
dedicado a la toxicología.
Finalmente, se ha reportado que la cromatografía gaseosa de monóxido
de carbono tiene una adecuada respuesta señal / concentración
sólo para niveles de monóxido por encima del 20% en sangre, de
manera que no respondería bien para medidas en individuos con intoxicaciones
subclínicas o para comparar individuos con niveles normales de CO en
sangre.
Determinación cuantitativa de carboxihemoglobina por el método de Espectrofotometría infrarroja
En la determinación de monóxido de carbono en sangre y aire espirado,
la espectrofotometría infrarroja confiere adecuada especificidad, condición
que no presentan otros recursos analíticos depurados tales como cromatografía
gaseosa. El procedimiento comienza con una extracción de los gases totales
físicamente disueltos o combinados con la hemoglobina.
El monóxido de carbono presenta al infrarrojo dos picos de absorción
a 2120 y 2170 cm-1 (4.6-4.7 m) y no presenta otra absorción
en el ámbito comprendido entre 700-4000 cm-1. Los gases que
absorben en esta región del espectro y que por lo tanto interfieren,
son el diazometano, cloruro de nitrosilo y propano que muy difícilmente
pueden hallarse en muestras de sangre. El dióxido de carbono puede mostrar
interferencias cuantitativas por su elevada concentración relativa aún
si su absorción máxima difiere de la del monóxido de carbono.
Estas interferencias quedan excluidas con la adopción de sistemas de
compensación o filtros adecuados.
Los equipos permiten determinar monóxido de carbono en un rango de 0
a 1000 ppm. En el análisis de sangre, la espectrofotometría infrarroja
utiliza un volumen total determinado de 1 a 5 ml. El mismo se trata con ferrricianuro
ácido y los gases liberados se analizan en el espectrofotómetro
infrarojo.
Para establecer el porcentaje de saturación o el coeficiente intoxicación
debe saturarse otra fracción de la muestra con monóxido de carbono
y analizarse en la misma forma, efectuando la pertinente corrección por
el monóxido de carbono físicamente disuelto. Con adecuadas modificaciones,
la espectrofotometría infrarroja posibilita el registro continuo de monóxido
de carbono en aire (detectores o registradores continuos).
Por otra parte, los ensayos en aire espirado permitieron revelar su presencia
en forma inmediata así como después de 30 minutos de haber fumado
un cigarrillo.
Determinación de monoxido de carbono en sangre por métodos químicos
Los métodos químicos emplean la cualidad del monóxido de carbono de reducir diversas sales metálicas oxidantes. Uno de los elementos metálicos de mayor aceptación lo constituye el paladio II. La propiedad reductora del monóxido de carbono se traduce en la siguiente forma:
Pd+2 + CO + H2O
Pdº
+ CO2 + 2H+
Este principio se emplea de diversas formas, una de ellas es el método de Gettler y Freimuth y otra variante es el de microdifusión
Método de Gettler y Freimuth
El monóxido de carbono liberado de la carboxihemoglobina por el ferrocianuro de potasio es arrastrado por aireación y pasado a través de un disco de papel sensibilizado con ClPd2. El CO produce una mancha oscura sobre el papel de filtro debido a la reacción de del paladio que se reduce a Pdº. Por comparación de la intensidad de la mancha con muestras patrones, se puede obtener una concentración aproximada a la cantidad de CO presente en la muestra.
Técnica
Reactivos
Solución de cloruro de paladio (0.5g de cloruro de paladio, 0.5 ml de
clorhídrico concentrado se llevan a 50 ml con agua destilada.
Solución ferricianuro de potasio-saponina: Ferricianuro de potasio 32
g, saponina 0.8 g agua bidestilada 100 ml.
Solución de ácido láctico (D:1.20) y llevar a 100 ml
Solución de acetato de plomo al 10%
Alcohol caprílico
Solución de cloruro cuproso amoniacal
Equipos
Fig. 3: Dispositivo empleado en la determinación de monóxido de carbono en sangre
Tres tubos de vidrio grueso con borde de 13 a 15 cm de largo y 2 cm diámetro.
Flange (dos discos de vidrio enfrentados para retención de papel de filtro)
Frasco de Mariotte
Pinzas de Hoffman
Perlas de vidrio
Procedimiento
El dispositivo se presenta en la Figura 3. El tubo A contiene 5 ml de solución
de cloruro cuproso amoniacal para retener monóxido de carbono del aire
e interferencias del medio del laboratorio. El tubo B contiene 2.0 ml de sangre
y se añaden 4 ml de ferricianuro-saponina y 2 ml de solución de
ácido láctico junto con 2 gotas de alcohol caprílico. El
tubo C contiene perlas de vidrio en cantidad que alcancen 4 cm de altura y 5
ml de acetato de plomo. Entre los discos del flange se coloca un disco de papel
de filtro Whatman Nº 3 cortado en forma circular humectado con la solución
de cloruro de paladio y sujetado en forma segura mediante dos gomitas para lograr
el cierre hermético. Se hace burbujear aire a través del dispositivo
aflojando la llave del frasco de Mariotte. La velocidad de escurrimiento debe
ser de 26 ml/minuto. Después de 15 minutos, se detiene el burbujeo y
se retira el papel reactivo, se lava con agua destilada para eliminar el exceso
de solución de cloruro de paladio y la mancha obtenida. Finalmente se
compara con la escala tipo obteniéndose el grado de saturación
de la sangre con respecto al monóxido de carbono.
La preparación de la escala se realiza saturando 10 ml de sangre oxalatada
con un contenido de hemoglobina de 80%-90% con monóxido de carbono puro,
el cual se obtiene por descomposición del formiato de sodio por acción
del ácido sulfúrico concentrado. Se hace burbujear el gas en la
muestra de sangre durante 15 minutos. Mezclando volúmenes iguales de
la muestra saturada con sangre normal, se obtiene un grado de saturación
equivalente al 50%, el cual se utiliza para la preparación de la escala
mezclando diferentes volúmenes de sangre normal y sangre saturada con
monóxido de carbono (Tabla 1). Cada muestra diluida en la forma expresada
se somete al procedimiento señalado a fin de obtener las manchas testigo.
La preparación de manchas para grados de saturación mayores al
50% no es necesaria en la práctica debido a que nunca se alcanzan valores
superiores al 50% de saturación.
Dado que la capacidad de saturación de la sangre para el monóxido
de carbono reside en el contenido de hemoglobina debe aplicarse el factor de
corrección correspondiente para cada caso.
Tabla 1: Preparación de la escala de saturación de monóxido de carbono
| Volumen de sangre con 50% saturacion CO (ml) |
Volumen de sangre normal (ml) | Porcentaje de saturacion obtenido |
| 4 | 1 | 40% |
| 3 | 2 | 30% |
| 2 | 3 | 20% |
| 1 | 4 | 10% |
| 1 | 5 | 5% |
CUESTIONARIO
1) Cual es el mecanismo de acción del monóxido de carbono
2) Describa la etiología de las intoxicaciones
3) Como procede para la toma de muestra y como realiza la determinación analítica correspondiente.
4) Que tipo de interferencias presentan los métodos descriptos.